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Mouse IL-17 ELISA Kit
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    检测原理:

    本试剂盒采用双抗体夹心酶联免疫吸附检测技术。特异性小鼠 IL-17抗体预包被在高亲和力的酶标板上。酶标板孔中加入标准品、待测样本和生物素化的检测抗体,经过孵育,样本中存在的IL-17与固相抗体和检测抗体结合,形成免疫复合物。洗涤去除未结合的物质后,加入辣根过氧化物酶标记的链霉亲和素(Streptavidin-HRP)。洗涤后,加入显色底物,避光显色。加入终止液终止反应,在450 nm波长(参考校正波长540nm570nm)测定吸光度值。

    检测类型:双抗夹心法

    形式:预包被96孔板

    检测样本类型:细胞上清液,血清,血浆

    上样量:100ul

    试剂盒组分:

    预包被96孔板、标准品、抗小鼠 IL-17检测抗体、稀释用缓冲液、显色液(AB)、洗涤液、终止液、SA-HRP、封板膜和说明书一份。

    灵敏度:1.8 pg/mL

    检测范围:15.6 - 1,000 pg/mL

    回收率范围:82-110%

    保存方法:2-8

    标准曲线图

     

    背景:

    小鼠白细胞介素 17IL-17,也叫 IL-17A,CTLA-8, 是一个 21 kDa 的不同程度 糖基化的多肽,属于 IL-17 家族。该家族的细胞因子均含有一个半胱氨酸结的折叠。 人们最初是从小鼠的细胞毒性细胞和大鼠的 T 淋巴细胞融合而成的被激活的杂交瘤细 胞中分离得到的 IL-17。小鼠 IL-17 前体由 158 个氨基酸组成,包括一个 25 个氨 基酸的信号肽和一个 15kDa 133 个氨基酸的成熟肽。人和小鼠的 IL-17 都有一 个保守的 N-端糖基化位点,该位点约 5kDaIL-17A 可形成一个 35-38kDa 的同源二聚 体或与 IL-17F 形成一个 45-48 的异源二聚体。成熟的小鼠 IL-17A 与人和大鼠的 IL-17A 氨基酸同源性分别为 61% 89%。尽管啮齿类动物和人的成熟 IL-17A 序列仅有一定程度的同源性,但人的 IL-17 对小鼠和大鼠的细胞也有活性。分泌IL-17 的细胞有 CD4+ Th17 T 细胞、帕内特细胞、GR1+CD11b+ 髓抑制细胞、CD27-γδ T 细胞、CD1+ NK1.1-iNK T 细胞和 CD3-CD4+ LTi 一样细胞。

    小鼠 IL-17 的高亲和受体已有报道,是一种 IL-17 RA IL-17RC 的异源多聚体, 组成比例约为 2:1IL-17 RA 是一个约 130 kDa I 型跨膜糖蛋白,且与 IL-17、肿瘤坏死因子或免疫球蛋白受体超家族成员没有相似性。IL-17 RC I型跨膜蛋白,约为 90-95 kDa,与 IL-17 RA 的氨基酸序列同源性仅为 30%。这两种受体对于 IL-17A IL-17 A: F 的活性都是必须的。当配体与 IL-17RA 结合后, 这两种受体随后形成功能性结合。

    IL-17 主要参与中性粒细胞的召集和生存。其产生最早被认为是 抗原刺激树突细胞的结果,导致 IL-23 的分泌。在非 T 细胞受体依赖的情况下,IL-23 会刺激 T 细胞分泌 IL-17。分泌的 IL-17 在骨髓中会刺激基质和成纤维细胞表达 G-CSF 和膜式干细胞因子,并由此增加 PMN 的分化和形成。IL-17 通过阻断中性粒细 胞的凋亡和促进 PMN 的体内循环,从而起到补充作用。在组织中,主要通过对 巨噬细胞和内皮细胞的作用,IL-17 可促进中性粒细胞的外渗。在巨噬细胞内,IL-17 可诱导 TNF-αIL-1βIL-6 的产生。TNF-αIL-1β再作用于内皮细胞,并促进 G-CSF的分泌,这一作用通过 IL-17 得到加强。通过诱导内皮细胞 CXC 趋化因子和一氧化 氮的释放,IL-17 起到了促进 PMN 内流汇集,由此提高了血管的通透性。IL-17 的效应不仅仅局限于中性粒细胞,在关节部位,IL-17 可以上调破骨细胞中 RANKL 的 表达量。这对破骨细胞的形成和随后的骨吸收起到了促进作用。

    温馨提示:本产品仅作科研实验使用,不支持临床等研究
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      • 如果我的样本是组织,有推荐处理组织样本的protocol吗?
      • 我们的ELISA试剂盒做组织样本,具体裂解方式参考如下:
        1、裂解液配置:建议选择:组织/细胞裂解液 (多因子检测)(abs9225)裂解液,在使用前按100:1的比例加入广谱型 
              蛋白酶抑制剂混合物(不含EDTA,100×DMSO储液)(abs9161),配置成工作液,现配现用;
        2、称量组织,按每10mg加入100ul裂解液工作液进行裂解针对组织,利用组织处理器或者其他组织处理装置,处理
              样本,保证样本处理完全;
        3、将裂解收的样品10000-14000rpm,4℃离心10min,取上清(建议组织裂解液离心两次);
        4、取上清做BCA总蛋白浓度测定,完成后续操作。BCA法测量蛋白浓度请参考BCA 蛋白定量试剂盒(abs9232)说明
              书;
        5、根据测定的蛋白浓度,将样本稀释成总蛋白浓度为1μg/μl左右即可进行ELISA实验(部分指标需根据预实验结果再
              行调整)。
      • ELISA数据处理有专门的软件吗?
      • 有,可以到如下链接下载免费版软件,点击下载
      • 同一样品多次活性测试结果差异大怎么解决?

      • 样本保存不当,会导致多次实验结果偏差较大,样本应尽量减少反复冻融,如需多次检测,需在取样后分装保存。

      • 检测样本是细胞培养上清,那么细胞数目对炎症因子的浓度有影响吗?

      • 有影响,所以不同样本可以比较的前提条件是培养细胞数水平接近一致。

      • 请问标曲是每次都要做吗?

      • 是的,每次实验,孵育时间,洗板次数等等条件均不一样,不同实验的标曲不能混用,做一次实验需要做一次标准曲线,并且用当次,同一块板上的标准曲线结果去计算板内样品的浓度,才能得到准确的结果。

      •  做预实验时每种要做几个复孔呀?

      • 预实验视情况而定,如果整个板子孔数较为充足,建议两个复孔,如不充足,单孔也可以。要尽量保证实验过程中加样准确。

      • 血清样本少量溶血,颜色稍深,对结果有影响吗?

      • 会有影响,建议取样时需注意,避免溶血、脂血等样本。如样本条件受限,建议用样本稀释液适当稀释,减少基质效应影响。

      • 试剂盒有推荐稀释浓度还需要自己测吗?

      • 试剂盒一般会给出不同样品的推荐稀释比例,但是为大致范围,最好还是根据自己的样本情况,设计预实验测量计算。

      • 加完终止液之后测的几次数据差别也蛮大?

      • 加完终止液后,显色反应也不是永远停止,形成的黄色颜色会随着时间延长继续加深,建议在15 min内读数。

      • 复孔差别比较大,是没洗干净吗?

      • 复孔值差异较大,主要原因应考虑加样是否准确,洗板过程中是否有残留以及是否有交叉污染。

      • 配好的抗体没用完如何保存,可保存多久?预实验用了一个试剂盒里面的部分板子和试剂,剩下的板子和试剂还能继续用于正式实验吗?
      • 一般来讲,配好的母液,可以在四度保存,最多一个月左右。剩下的板子和试剂是可以继续用于正式实验的,间隔时间不要太长,一个月之内均可,需注意试剂避免污染,板子保持干燥。

      • 最后显示的OD值在多少之间属于可用值,有要求吗?

      • 有的,为保证标曲的线性范围,建议最好标曲最高点OD值在0.8-3之间,同时,线性(四参数拟合)较好,副孔值CV值较低(15%以下)时,结果可用。
      • 样本总是在标准曲线之外,稀释100倍也是,怎么办?

      • 在设置稀释倍数之前,需要参考相关文献,对于一些表达极高的蛋白,确实会出现这种情况,建议继续提高稀释比例。

      • 试剂盒推荐用450540nm双波长检测,但条件有限可否换成450620的双波长?如何使用校准波长?还有,用空白孔校准可以么?

      • 可以的,TMB底物显色后,吸光峰值在450nm,另外的校准波长是防止气泡等杂质造成的干扰设置,避开450左右50nm以上即可。两次读取的OD值,用OD450 - OD校准波长即可。尽量还是建议有条件的选用双波长校准的方法,因为避免了不同孔的读数影响,防止出现空白孔污染,导致读数较高,无法校准的情况。

      • ELISA可以检测胞内蛋白么?

      • 可以的,选用支持组织匀浆的ELISA试剂盒即可,将组织样品或细胞样品进行裂解,提取胞内蛋白后进行蛋白定量,保证每孔上样总蛋白量一致即可。

      •  整个过程需要避光吗?避光需要避到什么程度呢?

      • ELISA实验中,在酶标抗体孵育,以及显色底物孵育这两步建议避光,其他步骤无需避光。避光可采用锡纸包裹,或将整个ELISA板子放入暗盒或抽屉等无光处即可。
      • 标准曲线在推荐的浓度下,r值为0.9,做了多次都是这样,怎么办?

      • 要仔细核对产品说明书,看是否用了推荐的拟合方法,如爱必信的ELISA试剂盒,需要使用四参数拟合方式进行拟合,用错拟合方式,会导致r方值较低;如拟合方式无误,需检查是否有个别标曲孔数值异常,排查实验中是否出现污染或倍比稀释时出现失误。

      • 封板膜什么时候用?每次加液后都要换吗?

      • 封板膜在孵育样品、检测抗体以及HRP酶标抗体是,都要盖好封板膜,减少挥发及污染几率。每次使用后要更换新的封板膜。

      • 手动洗板过程中,拍过抗体或抗原的滤纸需要扔吗?

      • 是需要更换的,防止造成交叉污染,影响实验结果的准确性。

      • 有的wash buffer析出结晶后在37℃也不溶解,怎么办?
      • 可提高至55度,并多次摇晃。溶解后按比例稀释即可使用。

      • 测得的值都低于标准曲线的最低值,是什么原因,应该怎么解决?

      • 基质效应导致,由于样本的基质环境相对于试剂盒中的稀释液更为复杂,可能存在部分成分抑制HRP酶活性,在样本中待测蛋白表达极低,甚至不表达的时候,OD值低于稀释液的值是存在的,按照0计算即可。首先是检查样品是否稀释倍数过高,降低稀释比,直至直接加样本原液,如还检测不出,需排查原因,建议在实验组别设置中添加阳性对照孔,用明确表达的样品作为阳性对照,如果标准曲线及阳性样品均可测得正常的表达浓度,则表明实验成功,其余待测样品表达含量低于检测下限,按照0计算即可。这种情况尤其对于炎症因子较为常见,在健康样本中,表达含量极低。

      • 因为检测限的原因,同一块ELISA板子,部分样本稀释,部分样本1:10稀释,部分1:20稀释,这样设置可行吗?结果可以比较吗?

      • 可以比较,不同稀释比例,是因为不同样本间的表达差异较大,只要保证稀释后的检测样品测量值准确,还原回稀释倍数后的浓度是可信的。可以用来比较不同样本的原始浓度差。
      • 试剂盒里面有捕获抗体么?

      • 即用型ELISA试剂盒中,捕获抗体已经预包被至试剂盒中的ELISA板上,没有单独的捕获抗体提供,直接使用ELISA板孵育稀释后的样本及标准品即可。

      • ELISA实验中,检测计算抗原的浓度,临界值怎么确定?

      • 根据曲线测定的浓度,建议落在标准曲线的中间位置较好,极限最好不要超过标准曲线的上下限,如果超出较多,会影响计算结果准确性,建议调整稀释比例。

      • In vivo周期长的话,不太好做预实验,怎么办?

      • In vivo造模取样后,可将样品分装,取一部分样品做ELISA预实验,剩余样品再进行正式实验;如多批次实验,操作较为一致,后续可取消预实验,根据前期结果进行ELISA实验浓度设置。

      • 做实验前怎么知道待测血清中炎症因子的范围呢?多大是高多小是低?

      • 需要根据文献推测,一般在健康人样本中,炎症因子表达很低,接近ELISA检测下限,样品无需稀释或1:1稀释即可,如已知为炎症疾病或造模样本,可参考文献,在预实验中设置1:10-100(或更高)的稀释比例,预实验检测后确定最佳浓度进行正式实验。

      • ELISA实验中的洗板步骤如果没有洗板机,需要如何操作?
      • 实验室ELISA实验做的较多,还是建议使用洗板机洗板,效果更好,也更方便控制。如果没有洗板机,在洗板过程中,需要注意洗板液添加后不要从孔中溢出,在加洗板液后,静置1-2min,甩干液体后,在吸水纸上大力拍干;重复三次。

      • ELISA实验中,酶标抗体识别的是哪个抗体?

      • 在双抗夹心法ELISA中,酶标抗体识别的是检测抗体,对检测抗体进行识别和酶标记。

      • 捕获抗体如何包被在96孔板上?

      • 如果选用的是即用型ELISA试剂盒,无需进行抗体包被;如果是非即用型的ELISA试剂盒,首先,要选择ELISA级别的板子,材质应为聚苯乙烯;然后用抗体包被液稀释(pH9.6的碳酸盐缓冲液或pH7.2PBSpH7-8Tris-HCl)成工作浓度,然后每孔加100 μl稀释后的捕获抗体,室温或4℃过夜包被,然后进行洗板和封闭之后即可使用,如需长期保存,需要真空冻干后保存。
      • ELISA实验中的捕获抗体和检测抗体是同一个抗体么?

      • 不是的,在双抗夹心法ELISA实验中,会同时用到捕获抗体和检测抗体,这两个抗体是针对同一抗原蛋白的不同抗原位点的两种抗体,这样才可以同时结合抗原分子。

      • ELISA可以测DNA的表观么?
      • 不可以,ELISA是利用免疫学原理,定量检测蛋白质表达的技术。测DNA表观遗传学,主要是检测DNA甲基化,可以选用ChIP技术。
      • 高背景的原因有哪些?如何改进?
      • 1、手动洗涤时请勿将洗涤液溢出孔外/检查洗板机是否正常工作,调节洗板机“洗涤量”、“洗涤循环”和“抽吸”等参数; 2、封闭的时间和温度是否适当,更换封闭buffer 3、检查底物在使用前是否曝光了,孵育底物过程微孔板是否曝光 4、检查是否按说明书稀释底物 5、加终止液三分钟后即读数
      • 重复性差的原因有哪些?如何改进?
      • 1.可能样本中有沉淀物、杂质,可以使用前先离心 2. 可能微孔板中有气泡,可以 小心用针尖挑破,注意不要划伤微孔板底部 3.可能微孔包被面被吸头划破,加液时小心操作 4.边际效应,实验之前将微孔板和试剂在室温下平衡,勿将微孔板置于温度变化太大的地方(如通风处、阳光直射处等),铝箔纸包住微孔板底部及下部外沿降低边际效 5.蒸发,各步之间,须使用封版胶密封反应板
      • 标曲做不出来的原因有哪些?如何改进?

      • 1.可能样本中有沉淀物、杂质,可以使用前先离心

        2. 可能微孔板中有气泡,可以 小心用针尖挑破,注意不要划伤微孔板底部

        3.可能微孔包被面被吸头划破,加液时小心操作

        4.边际效应,实验之前将微孔板和试剂在室温下平衡,勿将微孔板置于温度变化太大的地方(如通风处、阳光直射处等),铝箔纸包住微孔板底部及下部外沿降低边际效

        5.蒸发,各步之间,须使用封版胶密封反应板" "

        1. 标准品是否按说明书推荐重溶,稀释;注意保存方法及期限

        2.酶和底物不显色,进行颜色测试以判断酶及显色液是否正常工作

        3.显色时间不足/孵育温度低,延长显色时间/选择最适反应温度,确保实验室温度稳定;采用恒温孵育箱注意不要叠放微孔板

      • 没有信号的原因有哪些?如何改进?

      • 1.试剂盒不匹配:说明书中的标明的样本种属及具体类型;检测范围和灵敏度;有的试剂盒会标明回收率及线性值

        2.样本稀释度不足或过大:参考文献中对于浓度范围的描述,按说明书以及既有数据分析来稀释样本;若不清楚表达量如何,应对样本进行梯度稀释,选择最佳稀释浓度

        3.样本表达量低:通过其他实验验证样本是否表达;样本中掺入标准品做对照孔,如果OD值明显升高则样本中待检物较少

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