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  • 免疫(共)沉淀(IP/CoIP)试剂盒

    货号： abs955
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    abs955-50tests 现货 ￥2625.00
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    简介：免疫(共)沉淀(IP/CoIP)是基于抗体和蛋白的特异性亲和作用，通过捕获与蛋白或抗原特异性结合的抗体，进而从复杂的样品中捕获及富集目标蛋白，同时可以测定与之相互作用的蛋白或其它生物大分子。
    实验前：为了获得更好的实验结果，所有的步骤均需要根据实际情况进行优化。
    例如：根据细胞系或被捕获的抗原后续用途的不同可选择更加合适的细胞裂解条件。对于没有细胞壁结构的哺乳动物细胞，可以直接使用去污剂进行裂解，但其它细胞，则需要一些机械剪切力辅助，例如超声破碎。以下列出的（包括裂解液、孵育时间、体积及浓度）是作为初始尝试的条件建议，最终的优化需要根据实际情况调整。
    另外，细胞裂解物在进行免疫(共)沉淀前，可先进行蛋白免疫印迹法检测，以此来确定细胞裂解物里存在目标蛋白。
    一、试剂盒组分
    试剂名称体积保存条件
    Lysis buffer30ml4 ℃
    10*Wash buffer50ml4 ℃
    1*SDS 样品缓冲液1ml*24 ℃
    Protein A 琼脂糖珠250ul4 ℃
    Protein G 琼脂糖珠250ul4 ℃
     注： Lysis buffer 使用前，立刻加入 1 mM PMSF（推荐购买abs9146，自行配制）。
    二、使用方法

    A. 制备细胞裂解物
    1. 吸干培养基。添加含有调节分子的新鲜培养基，使其在预定的时间内对细胞进行处理。
    2. 收集细胞，去除培养基后用冰预冷的 1 X PBS 洗涤细胞一次。
    3. 去除 PBS 并在每个细胞板上（10 cm）加入 0.5 ml 冰预冷的 Lysis buffer，并在冰上孵育至少5分钟。
    4. 从板上刮下细胞，把提取物转移至微量离心管。置于冰上。
    5. 在冰上进行 3 次超声破碎，每次 5 秒。（PS：超声条件需根据液体量、探头直径以及最大功率调整。以200W功率超声仪器为例，用 3 mm 的探头。我们一般推荐使用 35%-40% 的最大功率进行 3 次超声脉冲， 每次超声之间停顿 10 秒。）
    6. 在 4 °C，在 14,000 x g 条件下，微量离心10分钟，将上清转移到新管中。上清液即为细胞裂解物。如有必要，裂解物可保存在 -80 °C。
    注：细胞裂解物制备好之后，可先进行蛋白免疫印迹法检测，以此来确定细胞裂解物里存在目标蛋白。
    B. 免疫沉淀法
    a) 细胞裂解物预清除（可选步骤）
    1. 向 500 μl（含总蛋白 200 -1000 ug）细胞裂解物中添加 5 μl Protein A 和 5 μl Protein G。
    2. 在 4 °C 下，旋转孵育 30 - 60 分钟。
    3. 4°C 条件下 12000g 离心1分钟，保留上清，待用。
    b) 抗原抗体结合
    1. 在新的离心管内加入 500 μl （含总蛋白 200 – 1000 ug）细胞裂解物（可以是预清洗后的细胞裂解物）。
    2. 加入目标蛋白的单克隆/多克隆抗体（1 – 5 μg）。
    3. 同时采用非特异免疫的同源抗体作为对照。
    4. 在 4 °C 轻柔混合过夜。
    c) 免疫复合物沉淀
    1. 抗体孵育过夜后，加入 5 μl Protein A 和 5 μl Protein G。
    2. 在 4 °C 温和地混匀1- 3小时或过夜。
    3. 12,000 g 离心1 分钟，保留沉淀。
    4. 使用 0.5 ml 1*Wash buffer 清洗沉淀，12,000 g 离心1分钟，保留沉淀。
    5. 重复第4步，共计清洗3次。
    注：清洗，去上清的时候需要注意避免吸走填料
    C. 用蛋白免疫印迹法进行分析
    1. 在 20 - 40 μl 1*SDS 样品缓冲液中重悬沉淀物，涡旋振荡，然后再微量离心30秒，以使附着管壁的珠子和液体到管底。
    2. 将样品加热至 95 - 100 °C 并持续2 - 5分钟，然后在 14,000 g下瞬时离心1分钟，取上清液。
    3. 将样品（15 – 30 μl）上样到 SDS-PAGE 凝胶上。
    4. 用蛋白质印迹法分析样品。
    三、试剂盒保存方法
    本试剂盒4℃保存，1年有效。
    注意：Protein A和Protein G的基质为20%乙醇，较易挥发，使用时应注意密封，如出现挥发情况，可使用20%乙醇重悬。

     

    温馨提示：本产品仅作科研实验使用，不支持临床等研究
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      • 问 如果我后续是想要跑native胶，不做变性电泳，不能用试剂盒里的1*SDS样本缓冲液，我应该用什么替代呢？
      • 答 用不含有SDS的WB上样缓冲液，但不经过变性，蛋白能否解离下来，我们无法确定，不能保证您后续的实验效果
      • 问 如果我的细胞裂解物里面蛋白含量高于试剂盒要求的总蛋白含量，我应该用什么试剂进行稀释呢？
      • 答 常规用PBS稀释即可
      • 问 lysis buffer和PMSF怎么使用？
      • 答 根据使用量，取每1ml lysis buffer加入10ul PMSF(100mM)，使PMSF的最终浓度为1mM，混匀备用 （PMSF现用现加）。
      • 问 protein A和protein G beads怎么选？
      • 答 各取5ul。
      • 问 超声破碎冰上操作是必须的吗？4℃条件能否微调？
      • 答 建议冰上操作，4℃可以微调。
      • 问 beads出现吸不出来的情况，怎么处理？
      • 答 吸之前需注意枪头要剪一下再吸，如若beads吸不上来，可加入等体积的20%乙醇混匀后再吸。
      • 问 如果没有超声破碎仪的话，能不能用酶解的办法破碎细胞？
      • 答 酶解和超声都可以，酶按照实验室正常使用浓度配制即可。
      • 问 实验的时候能抗体beads一起加吗？还是说先加抗体再加beads？
      • 答 都可以，但我们建议参考产品说明书使用，先加抗体再加beads。
      • 问 10*Wash buffer如何稀释？一定要使用配套的吗？
      • 答 dd水稀释即可，最终浓度是1 * washing buffer 即可。
      • 问 怎么看出现的条带结果？
      • 答 比较关注的是三条泳道，input和IgG以及检测互相作用的泳道，理论上input有一条目的条带， IgG没有条带。如果input没有条带，说明在进行免疫共沉淀之前没有进行WB验证，建议先验证之后 再重新操作。若IgG阴性对照出现条带，是不正常的，应是受重链和轻链的影响，说明使用的二抗 不正确， 建议更换特异性更强的二抗.
      • 问 免疫共沉淀试剂盒裂解液能用于组织吗？比例又是如何？
      • 答 可用于组织，要先将组织研磨成匀浆，比例和细胞比例一致。
      • 问 阴性对照lgG组后续WB有条带一般是什么原因？
      • 答 首先需要排除lgG和后续WB一抗同源导致的轻重链的干扰条带（25kd和50kd附近）；再者建议参考本试剂盒免疫沉淀法“可选步骤”以排除Protein A/G的非特异性结合；再就是考虑lgG的问题可以换用其他品牌lgG尝试。
      • 问 步骤上的可选步骤能否省略？
      • 答 可选步骤为预处理，目的为去除样本中可与protein A/G非特异结合的蛋白质，减少干扰，如CoIP实验中发现有较多杂带，可考虑选做；但应注意，选择此步骤后，试剂盒中protein A和protein G对应实验样本数减半。

      Certificate of Analysis(COA)

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