小爱课堂:免疫组化实验操作及注意事项(上)
时间:2019-09-08 点击次数:802
免疫组化(Immunohistochemistry,IHC)是利用抗原与抗体特异性结合的原理,通过化学反应使标记抗体的显色剂显色来确定组织细胞内抗原,对其进行定位、定性及定量的一项技术。IHC是一项基础研究实验,其总体实验难度较低,但想要做出漂亮的染色结果却没有那么简单,往往在某一个细节的疏忽会导致结果的差异较大,下面小爱为大家分析一下实验的注意事项,希望同学们在此方面多加注意。
1、标本固定
固定的目的是为了使蛋白质凝固,减少或终止内源性/外源性细胞内分解酶的反应,防止组织细胞自溶,保存组织或细胞内的抗原性。现在常用的固定剂有中性甲醛液,4%多聚甲醛-磷酸盐缓冲液。有些固定剂对特殊组织有更好的效果,如苦味PLP固定液对于含糖组织保存更好,Helly固定液对于胰岛和垂体效果较好等。
2、脱水、石蜡包埋和制片
脱水用梯度乙醇(由低到高)充分脱水,对于一些易脆的组织应减少高浓度酒精里的停留时间,透明的时间也应该控制缩短。对组织浸蜡时,一般选用56℃-58℃熔点石蜡,浸蜡温度最好不超过60℃,防止抗原的损失。包埋时应果断迅速,切片时注意检查刀片是否出现缺口,防止;蜡带出现裂痕。
3、脱蜡和水化
使组织恢复到固定后的正常状态暴露抗原,方便与一抗结合。若脱蜡与水化不完全易出现局灶性反应和浸洗不完全,产生非特异性背景着色。
4、抗原修复
由于组织在甲醛或多聚甲醛在固定中,发生蛋白之间交联及醛基的封闭作用,从而掩盖抗原决定簇。通过抗原修复,使得细胞内抗原决定簇重新暴露,提高抗原检测率,常用方法通常使用高压加热修复,使用高压加热修复对修复温度和时间的把握十分重要,温度越高修复时间越短,温度与修复时间呈负相关。修复结束后注意室温冷却,让蛋白自然复性。另外,大家尽量使用过量的抗原修复液,防止高温液体挥发干涸,对切片造成不可逆影响。
5、标本固定
传统的免疫组化法容易受到内源性过氧化物酶和生物素的干扰,必须对其进行灭活和封闭。灭活内源性过氧化酶一般用3%过氧化氢灭活10min左右,用甲醇配制过氧化氢更适合于保护抗原和固定组织。
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