免疫印迹(wb实验)常见问题解答之上样、电泳与转膜
时间:2019-08-22 点击次数:6705
1)WB实验使用的膜哪种最好啊,PVDF好还是NC膜,两者如何选择?
PVDF膜价格相对NC较贵,但可重复使用,特别适合蛋白印迹,结合能力较强。 NC膜价格比较便宜,应用较广,结合牢固性差一些,韧性也不如PVDF,不能重复使用,但蛋白吸附容量高,亲水性较好。具体使用还要参考相关实验需求。
2)半干转膜是否要求膜,滤纸,胶同样大小?因为胶大小不一定规则,膜和滤纸会大一点,那样会不会短路?什么是短路?如何控制和发现短路呢?
可以相等,但是如果纸、膜比凝胶大就比较容易形成短路了,上下两层虑纸也不能因过大而相互接触,这样同样会短路,电流不会通过胶和虑纸。转移前和转移过程中看看电压就行,正常的半干是慢慢变高的, 最后结束时一般是开始的1.5-3倍都是正常的。一般Buffer和滤纸选的对就不会短路。
3)Western blot实验哪种染色好?
● 阴离子染料是较常用的,特别是氨基黑,脱色快,背景低检测极限可达到1.5μg,考马斯亮蓝虽然与氨基黑有相同的灵敏度,但脱色慢,背景高。丽春红S和快绿在检测后容易从蛋白质中除去 ,以便进行随后的氨基酸分析。缺点是:溶剂系统的甲醇会引起硝化纤维素膜的 皱缩或破坏。不能用语正电贺的膜。灵敏度低。
● 胶体金,灵敏度高,检测范围可到pg级,但染色比稳定。
● 生物素化灵敏度位于1、2之间,可用于任何一种膜。
4)wb实验中,如果不能很好地将大分子量蛋白转移到膜上, 转移效率低怎么样解决?
可以考虑:转移缓冲液中加入20%甲醇(是指终浓度)(优化的转移缓冲液,可以参考《爱必信实验指南之Western blot手册》),因为甲醇可降低蛋白质洗脱效率,但可增加蛋白质和NC膜的结合能力,甲醇可以防止凝胶变形,甲醇对高分子量蛋白质可延长转移时间;转移缓冲液加入终浓度0.1%SDS,也是为了增加转移效率;用优质的转移膜,或使用小孔径的NC膜(0.2微米);使用戊二醛交联;低浓度胶,如低至6%。太大时还可以考虑用琼脂糖胶;提高转移电压/电流;增加转移时间
5)蛋白免疫印迹实验时,PVDF膜重复利用几次?
重复利用指的是可以在显影定影完成以后重新洗脱(stripping buffer)然后重新封闭,一抗(可以是不同的,前提是目的蛋白在pvdf膜上),二抗孵育,显影定影。重复利用的情况还要看实验你的蛋白丰度 ,每一次stripping都会洗掉蛋白,同时有些抗体结合紧的也洗不完全,所以要看根据具体实验情况而定。
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